文章目录

• • 前言
  • FASTA
  • • • 例子：血红蛋白α的核酸和蛋白质序列
  • FASTQ
  • • FASTA FASTQ 对比
  • FASTQ 转为 FASTA
  • • • 使用基本的命令：sed、paste、awk
      • 使用现有工具：Bioawk、Seqtk
      • FASTA 到 FASTQ
  • 闲聊

前言

FASTA和FASTQ文件，其实还是文本文件，用于存储序列信息。平时为了存储方便，节省空间，所以变成了GZ的压缩文件（二进制文件，不能直接用head 、less等命令直接查看）。之前没有好好记笔记，现在补上😑

FASTA

FASTA是一种非常简单的生物序列储存格式，包括核酸序列（DNA/RNA）或者组成蛋白质的氨基酸序列（Amino Acid sequence，简称AA序列）。主要由交替重复的两部分（行）组成：

• 以 “ > ” 为开始的行，主要储存的是序列的描述信息；
• 序列部分，中间前后都可以含有空格

例子：血红蛋白α的核酸和蛋白质序列

# 核酸序列
>gi|13650073|gb|AF349571.1| Homo sapiens hemoglobin alpha-1 globin chain (HBA1) mRNA, complete cds
CCCACAGACTCAGAGAGAACCCACCATGGTGCTGTCTCCTGACGACAAGACCAACGTCAAGGCCGCCTGG
GGTAAGGTCGGCGCGCACGCTGGCGAGTATGGTGCGGAGGCCCTGGAGAGGATGTTCCTGTCCTTCCCCA
CCACCAAGACCTACTTCCCGCACTTCGACCTGAGCCACGGCTCTGCCCAGGTTAAGGGCCACGGCAAGAA
GGTGGCCGACGCGCTGACCAACGCCGTGGCGCACGTGGACGACATGCCCAACGCGCTGTCCGCCCTGAGC
GACCTGCACGCGCACAAGCTTCGGGTGGACCCGGTCAACTTCAAGCTCCTAAGCCACTGCCTGCTGGTGA
CCCTGGCCGCCCACCTCCCCGCCGAGTTCACCCCTGCGGTGCACGCCTCCCTGGACAAGTTCCTGGCTTC
TGTGAGCACCGTGCTGACCTCCAAATACCGTTAAGCTGGAGCCTCGGTGGCCATGCTTCTTGCCCCTTTG
G

# 蛋白序列
>sp|P69905|HBA_HUMAN Hemoglobin subunit alpha OS=Homo sapiens GN=HBA1 
MVLSPADKTNVKAAWGKVGAHAGEYGAEALERMFLSFPTTKTYFPHFDLSHGSAQVKGHG
KKVADALTNAVAHVDDMPNALSALSDLHAHKLRVDPVNFKLLSHCLLVTLAAHLPAEFTP
AVHASLDKFLASVSTVLTSKYR

FASTQ

FASTQ文件其实就是FASTA文件的扩展，把测序的质量信息也存储在文件中。在这种格式中，序列和质量分数都表示为单个ASCII字符。主要由四个包含不同信息的交替重复部分（行）组成：

• 第一行，以@起始的，包含序列信息等可选描述，如测序机器编号等
• 第二行，序列字符
• 第三行，“+”，没错，只有个加号
• 第四行，表征第二行序列的测序质量信息编码（ASCII值），必须包含与第二行序列相同数量的字符。表征参考错误率，可以简单理解为对应位置碱基的质量值，越大则测序质量越好。不同的测序仪，会有不同的标准。
  

计算方式的细节，参见：https://zhuanlan.zhihu.com/p/20714540

FASTA FASTQ 对比

见图：

FASTQ 转为 FASTA

了解了二者的格式，格式的转换就相对容易，方式的选择就会多种多样。

使用基本的命令：sed、paste、awk

sed可以用来选择性的输出所需的行，所以，只要在Fastq文件的每4行中，选择打印第1、2行，就可以完成FASTQ到FASTA的转换：

sed -n '1~4s/^@/>/p;2~4p' INFILE.fastq > OUTFILE.fasta

如果不太好理解，也可以配合paste命令，将FASTQ的每四行排列为以制表符分隔的一行，然后使用sed + tr命令转换：

cat INFILE.fastq | paste - - - - |cut -f 1, 2| sed 's/@/>/'g | tr -s "/t" "/n" > OUTFILE.fasta

有了转换思路，尝试用更全面的awk命令将FASTQ转换为FASTA（与其说是命令，我更倾向awk是一种语言）：

cat infile.fq | awk '{if(NR%4==1) {printf(">%s\n",substr($0,2));} else if(NR%4==2) print;}' > file.fa

简单解释一下，NR代表记录数，循环当中可以简单的理解为 “ 第几行 ” ，或者说是 “ 行号 ” 。在END块内使用，就是文件总记录数（差不多就是总行数）。那么，NR%4就是行号除以4的余数，head -n 8 tmp.fq | awk '{printf("Line:%s remainder: %s\ncontext: %s\n", NR, NR%4, $0)}'：分别显示行号（Line），行号除以4的余数（remainder）和该行的内容（context）

Line:1 remainder: 1
context: @A00234:1023:HLGC5DSX3:1:1101:1253:1000 1:N:0:ATCGTACT
Line:2 remainder: 2
context: NGATTGATCGATGAGTAAACAAAGTGAGCAACAGACAGAAAAGGGGCTGTCTCTTATACACATCTCCGAGCCCACGAGACATCGTACTATCTCGTATGCCGTCTTCTGCTTGAAAAATGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGG
Line:3 remainder: 3
context: +
Line:4 remainder: 0
context: #FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF:FFFF,FFFFFFFFFFF,FFFFFFFFFFFFFFF:FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF:FFFFF,FFFFF,,F,FF:F,FF:F,,,,:,,,:::F,:FFFF:FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF
Line:5 remainder: 1
context: @A00234:1023:HLGC5DSX3:1:1101:1542:1000 1:N:0:ATCGTACT
Line:6 remainder: 2
context: NTTTGATTCCGTACTTTGCCTATTCGGTATTCCGAGAGGCTGGTCGGATTGGGTTACAGCCTTGTCTGTATAGGAGCTGTCTCTTATACACATCTCCGAGCCCACGAGACATCGTACTATCTCGTATGCCCTCTTCTGCTTGAAAAATGG
Line:7 remainder: 3
context: +
Line:8 remainder: 0
context: #FFFFFFFFF:FFFFFFFF,FFFFFF:FFFFFFFFFFFFFFFFFFF,FF:FFFFFFF:FFF:FFFFFFFFFFFFFFFF:FFFFFFFFFFFFF:FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF::FFFFFFF,:,F,:FF,,,,,,F,F,FF,,,,

可以看到当余数为1或者2的时候，就是转换需要的，所以此时使用判断语句，当余数等于 1 或者 2 的时候，打印需要的内容。这里还使用了awk内置函数substr，语法：substr(input-string, location, length)，为了去除@符号，所以就从序列的第二位开始打印。

使用现有工具：Bioawk、Seqtk

Bioawk & Seqtk
来自李恒大佬开发的工具，使用方式：

bioawk -c fastx '{print ">"$name"\n"$seq}' input.fastq > output.fasta
seqtk seq -a input.fastq > output.fasta

可以使用压缩文件 (.gz) 作为输入

EMBOSS:seqret
使用方式：

seqret -sequence reads.fastq -outseq reads.fasta

FASTX-toolkit
fastq_to_fasta函数，适合超大数据：

fastq_to_fasta -h
usage: fastq_to_fasta [-h] [-r] [-n] [-v] [-z] [-i INFILE] [-o OUTFILE]
# Remember to use -Q33 for illumina reads!
version 0.0.6
	   [-h]         = This helpful help screen.
	   [-r]         = Rename sequence identifiers to numbers.
	   [-n]         = keep sequences with unknown (N) nucleotides.
			       Default is to discard such sequences.
	   [-v]         = Verbose - report number of sequences.
			       If [-o] is specified,  report will be printed to STDOUT.
			       If [-o] is not specified (and output goes to STDOUT),
			       report will be printed to STDERR.
	   [-z]         = Compress output with GZIP.
	   [-i INFILE]  = FASTA/Q input file. default is STDIN.
	   [-o OUTFILE] = FASTA output file. default is STDOUT.

FASTA 到 FASTQ

了解前面，也知道，实现这种转换的关键是质量信息，但是，咱没有，所有这时候就需要模拟一个，已经有一些工具帮咱实现了类似功能，比如python工具pyfastaq、bioconvert等，代码也很简单，比如：

# pyfastaq 默认质量40
fastaq to_fake_qual in.fasta - | fastaq fasta_to_fastq in.fasta - out.fastq
# bioconvert 使用虚拟质量 "I", 并且第一行信息不加其他的东西
bioconvert fasta2fastq in.fa tout.fq

闲聊

重要的是了解格式，掌握之后，格式之间的转换就会得心应手，至于用什么工具，什么语言写的工具，看自己喜欢喽，当然，对于生物信息学，Linux系统、命令行工具暂时还是绕不过去的，必须要掌握。
至于其他语言，只要能达成目的！！